индигенная микрофлора что это значит

Микрофлора полости рта

Последнее обновление: 11.11.2021

От состояния микрофлоры полости рта зависит не только здоровье зубов и десен, но и работа органов пищеварения, иммунной и других систем и органов. Давайте разберемся, что представляет собой эта часть организма, что влияет на состояния полости рта и как быстро восстановить нормальную работу микрофлоры.

Что представляет собой микрофлора полости рта?

Удивительно, но во рту здорового человека живет примерно 160 видов микроорганизмов. Вам, наверное, приходилось слышать о том, что «рот — это самое грязное место в организме». Отчасти это утверждение верно: ротовая полость — один из наиболее заселенных отделов тела человека.

Микроорганизмы попадают в ротовую полость с пищей и водой, а также из воздуха. Именно во рту наблюдаются самые благоприятные условия для развития бактерий. В этой части тела всегда стоит равномерная влажность и температура (примерно 37 °С). Обилие питательных веществ, достаточное содержание кислорода, наличие складок в полости рта, межзубных промежутков и десневых карманов, слабощелочная pH провоцируют размножение различных бактерий.

Микроорганизмы неравномерно распределяются в полости рта. Максимальное их количество наблюдается на поверхности зубов и на спинке языка. В одном грамме зубного налета содержится примерно 300 миллиардов микробов, а в слюне — примерно 900 миллионов на 1 миллилитр.

Можно очень долго перечислять все виды бактерий, заселяющих микрофлору полости рта. Важно понимать, что каждый человек уникален, и для оценки «нормальности» микрофлоры нужно знать особенности конкретного организма.

Например, в одном случае большое количество лактобактерий в полости рта будет сохранять зубы, а в другом — образование большого количества молочной кислоты в процессе их жизнедеятельности задержит рост других важнейших микроорганизмов. Снижается число стафилококков, дизентерийных и брюшнотифозных палочек, активизируются кариозные процессы, и микрофлору полости рта придется восстанавливать.

Нарушение микрофлоры полости рта: причины

Дисбактериоз ротовой полости могут спровоцировать самые разные заболевания и проблемы. Нарушение условно-патогенной микрофлоры полости рта чаще всего вызывают такие проблемы, как:

Стадии дисбактериоза

В зависимости от степени развития заболевания стоматологи различают четыре стадии дисбактериоза:

Для запущенных форм дисбактериоза характерны такие симптомы, как:

Методы восстановления микрофлоры полости рта

Лечение дисбактериоза зависит, в первую очередь от характера возбудителя, который определяется на основании экспертизы в стоматологии.

К сожалению, зачастую постановка диагноза при дисбактериозе бывает затрудненной, так как на начальном этапе болезнь никак не проявляет себя. При малейших подозрениях на заболевание стоматолог направляет пациента на мазок с поверхности слизистых, анализы крови и мочи.

В зависимости от диагностированной причины дисбактериоза стоматолог может назначить следующие методы лечения заболевания:

В редких случаях назначаются противогрибковые средства и антибиотики.

Как правило, длительность лечения дисбактериоза составляет 2-4 недели и зависит от состояния здоровья пациента, количества очагов воспаления и имеющихся осложнений заболевания.

Надежным помощником в борьбе с дисбактериозом станет пробиотический комплекс АСЕПТА PARODONTAL*, источник лактобактерий для восстановления микрофлоры полости рта. Этот уникальный комплекс с запатентованными штаммами лактобактерий и витамином D обладает способностью эффективно восстанавливать микрофлору полости рта. Комплекс нормализует бактериальную флору в ротовой полости, устраняет неприятный запах изо рта и препятствует образованию биопленок патогенных микроорганизмов.

Для улучшения эффективности назначенной терапии стоматологи рекомендуют отказаться от вредных привычек (хотя бы на время лечения), пересмотреть рацион, уделив внимание растительной пищи и обязательно ухаживать за полостью рта после каждого приема пищи.

Возможные осложнения дисбактериоза

Каждому пациенту важно внимательно следить за состоянием микрофлоры полости рта. Отсутствие лечения дисбактериоза может привести к таким неприятным заболеваниям, как:

Кроме того, научно доказана тесная взаимосвязь состояния микрофлоры полости рта с состоянием сердечнососудистой системы. В 2008 году в США была доказано, что заболевания периодонта как источник хронического воспаления являются независимым фактором риска возникновения ишемической болезни сердца (ИБС).

Итак, теперь вам известна роль нормальной микрофлоры полости рта в организме человека. Относитесь к себе внимательно, и ваш здоровый организм будет радовать вас каждый день.

Клинические исследования

Проведенные в 10-ом отделении Cтоматологии и челюстно-лицевой хирургии Стоматологического факультета Международного университета Каталонии, доказали, что применение лактобактерий помогает снизить болевые ощущения и трудности с приемом пищи после удаления зубов у взрослых пациентов.

Эффективность применения комплексной терапии в лечении заболеваний пародонта. (кафедра пародонтологии СФ ГБОУ ВПО МГМСУИМ.А.И.Евдокимова. Москва.)
Немерюк Д.А.- доцент, к.м.н., Дикинова Б.С.- аспирант кафедры пародонтологии СФ Царгасова М.О.- аспирант кафедры пародонтологии СФ Яшкова В.В.- аспирант кафедры пародонтологии СФ
кафедра пародонтологии СФ ГБОУ ВПО МГМСУИМ.А.И.Евдокимова. Москва

Источник

Микробиоценоз желудочно-кишечного тракта: современное состояние проблемы

Определите значение слов, и вы избавите свет от половины его заблуждений. Декарт Афоризм, вынесенный в эпиграф данной статьи, как нельзя лучше отражает состояние проблемы по дисбиозам, поскольку до сих пор остается множество вопросов.

Определите значение слов,
и вы избавите свет от половины его заблуждений.
Декарт

Афоризм, вынесенный в эпиграф данной статьи, как нельзя лучше отражает состояние проблемы по дисбиозам, поскольку до сих пор остается множество вопросов. Врачи нередко используют в качестве синонимов термины «дисбактериоз», «дисбиоз», «микроэкология кишечника», «микробиоценоз кишечника», которые, в строго научном плане, не эквивалентны. Принципиальный вопрос даже не в используемых терминах, а в понимании сути проблемы и ее общебиологического значения. Его решение позволит более обоснованно и нацеленно проводить терапию, направленную на коррекцию микробиоценоза.

Общие представления о нормальном микробиоценозе ЖКТ

Однако бактерии неравномерно распределены в ЖКТ. Если в желудке плотность микробной колонизации невелика и составляет всего около 103–104 КОЕ/мл, а в подвздошной кишке — 107–108 КОЕ/мл, то уже в области илеоцекального клапана в ободочной кишке градиент плотности бактерий достигает 1011–1012 КОЕ/мл [15]. Несмотря на столь обширное разнообразие видов бактерий, обитающих в ЖКТ, большинство могут идентифицироваться только молекулярно-генетически [13].

Среди бактерий-комменсалов, культивированных из ЖКТ, более 99,9% являются облигатными анаэробами, из которых доминирующими представителями являются: Bacteroides, Bifidobacterium, Eubacterium, Lactobacillus, Clostridium, Fusobacterium, Peptococcus, Peptostreptococcus, Escherichia и Veillonella [16]. Состав обнаруживаемых бактерий в различных отделах ЖКТ весьма вариабелен. В зависимости от частоты и постоянства обнаружения бактерий, вся микрофлора подразделяется на три группы (табл. 1).

Индивидуальность и стабильность микробиоценоза ЖКТ в физиологических условиях у человека является одной из характерных черт. Механизмы поддержания стабильности качественных и количественных параметров индигенной микрофлоры, несмотря на перманентное поступление экзогенных микроорганизмов с водой и пищей, пока до конца не выяснены. Среди ведущих факторов, обеспечивающих такую стабильность, традиционно рассматривают естественные природные защитные системы, которые обеспечивают в том числе и неспецифическую противоинфекционную резистентность (табл. 2).

Хотя структурно-функциональное значение этих систем в обеспечении стабильности микробиоценоза изучено не в равной степени, имеющиеся клинические наблюдения наглядно свидетельствуют о том, что нарушения их функ­циональной активности закономерно сопровождаются изменением состава флоры. Особенно велико влияние нормальной кислотности желудочного сока, обеспечивающего минимальное поступление экзогенных микроорганизмов в тонкую кишку [17].

Кроме этого, развитие концепции микробного сообщества (микробиоты) подразумевает наличие между микроорганизмами регуляторных влияний, позволяющих им координированно участвовать в процессах, происходящих в определенных биотопах (в частности, в ЖКТ). Одним из ключевых механизмов межклеточного взаимодействия между бактериями является механизм quorum sensing («чувство кворума»), впервые описанный в 1999 г. [18], но фактически совершенно не изученный в индигенной микрофлоре ЖКТ.

Клинические аспекты нарушений микробиоценоза ЖКТ

Современные исследования свидетельствуют, что облигатная микрофлора ЖКТ непосредственно участвует во многих жизненно важных процессах макроорганизма внутри самого пищеварительного тракта, а также оказывает многочисленные и разнообразные системные регулирующие функции, в силу чего индигенную микрофлору (нормальный микробиоценоз) кишечника нередко рассматривают в качестве составной части макроорганизма или как экстракорпоральный орган (табл. 3).

Нарушение микробиоценоза ЖКТ, характеризующееся снижением качественных и количественных показателей облигатной и факультативной микрофлоры, способно оказывать и негативное влияние на здоровье человека. Помимо «выпадения» физиологических функций, связанных со снижением плотности присутствия индигенной микрофлоры, развитие дисбиоза может быть сопряжено: а) с транслокацией бактерий и развитием эндогенных инфекционных процессов (вплоть до гнойно-септических состояний); б) со снижением резистентности организма; в) с развитием аллергических и иммунопатологических состояний; г) формированием патогенных клонов бактерий, обусловленным обилием в просвете кишечника плазмидных и хромосомных генов.

Принципы коррекции дисбиотических нарушений ЖКТ

Проблема изучения микробиоценоза ЖКТ сводится к попыткам его коррекции с помощью микробиологических препаратов. Эти попытки предпринимались и на заре изучения данной проблемы (Л. Г. Перетц), и с нарастающей интенсивностью продолжаются сейчас. На сегодняшний день накоплен обширный опыт применения пробиотиков. Обычно их используют в качестве профилактических препаратов и с целью коррекции дисбиотических нарушений. Однако имеется немало статей, в которых описывают и их терапевтический эффект при ряде патологических состояний [19–24].

Поскольку развитие дисбиоза характеризуется не банальным дефицитом представителей облигатной и/или факультативной микрофлоры, а является индикатором, свидетельствующим о нарушении микроэкосистемы, простого назначения пробиотиков с целью коррекции микробиоценоза бывает явно недостаточно. Главной целью врача должно стать не «засевание» слизистой кишечника пациентов нормальной микрофлорой, а восстановление микробиоценоза ЖКТ и плотности колонизации индигенной микрофлоры. Достижение данной цели возможно:

Пребиотики представляют собой химические компоненты (микробного и немикробного происхождения), способные избирательно стимулировать рост и/или метаболическую активность одной или нескольких групп бактерий, входящих в состав нормальной индигенной микрофлоры. Комбинированные препараты, в состав которых входят бактерийные препараты и стимуляторы роста, обозначают как синбиотики.

Согласно современным представлениям [10], штаммы, используемые в качестве пробиотиков, должны отвечать следующим критериям: а) быть безопасносными для человека; б) быть резистентными к действию кислого содержимого желудка, желчи и ферментам поджелудочной железы; в) обладать выраженными адгезивными свойствами в отношении эпителиальных клеток слизистой оболочки ЖКТ; г) проявлять антимикробную активность; д) ингибировать адгезию патогенных бактерий; е) быть резистентными к действию антибиотиков; ж) сохранять стабильность при хранении препарата.

Наиболее часто в качестве пробиотиков используют различные виды лакто- и бифидобактерий (табл. 4).

Предпочтение, отдаваемое препаратам, содержащим молочнокислые бактерии Lactobacillus spp. и Bifidobacterium spp., обусловлено тем, что они резистентны к действию желудочного сока, желчи и ферментам поджелудочной железы, легко адгезируются и колонизируют слизистую оболочку кишечника.

В целях повышения клинической эффективности пробиотиков в настоящее время предпочтение отдается разработке и использованию комплексных препаратов, в состав которых входит несколько штаммов бифидо- и лактобактерий, витаминные комплексы, пектины, что, как полагают, способствует повышению их адгезивности и колонизации слизистой оболочки кишечника. Капсульные формы также имеют определенные преимущества как в стабильности препарата, так и в сохранении активности штамма при прохождении через кислотный барьер желудка.

К таким препаратам относятся Линекс, Бификол, Ацилакт, Аципол, Бифистим и др. Длительность курса лечения пробиотиками обычно составляет от 2 нед до 1–2 мес. Прием пробиотиков целесообразно сочетать с употреблением щелочных растворов (столовые минеральные воды).

Клиническая эффективность пробиотиков связана с колонизацией слизистой оболочки кишечника и заместительным восстановлением функций нормальной индигенной микрофлоры кишечника (табл. 3), что обеспечивает создание микроэкологической среды, способствующей восстановлению индигенной микрофлоры. Хотя штаммы бактерий, используемые в производстве пробиотиков, отобраны из состава микрофлоры ЖКТ человека, они все же не обладают длительной колонизационной резистентностью и элиминируются из кишечника в течение 3–7 нед.

В последние годы широкое распространение в качестве пробиотиков получил препарат Энтерол, в состав которого входят дрожжи Saccharomyces boulardii. Данные дрожжи не входят в состав нормальной индигенной микрофлоры ЖКТ, однако обладают выраженными антагонистическими свойствами в отношении широкого спектра патогенных и условно-патогенных бактерий, сохраняют жизнеспособность при транзите по ЖКТ, абсолютно резистентны к действию любых антибактериальных препаратов (чувствительны только к противогрибковым препаратам). Спектр их ферментативной активности, по данным современных исследований, обеспечивает им участие в процессах пищеварения и обмена веществ. Saccharomyces boulardii относят к самоэлиминирующимся штаммам, поскольку их элиминация происходит в течение 3–4 дней после прекращения приема препарата. Обычный курс лечения Энтеролом составляет 7–10 дней.

Все большее внимание при восстановлении микробиоценоза кишечника уделяется относительно новому классу препаратов — пребиотикам, важнейшим требованием к которым является селективность действия только на индигенную микрофлору без усиления роста и размножения токсинпродуцирующих клостридий, токсигенных штаммов кишечной палочки и протеолитических бактероидов. Использование этих препаратов возможно только в случае доминирования в составе индигенной микрофлоры кишечника бифидо- и лактобактерий.

Наиболее часто используемыми пребиотиками являются Хилак форте и различные препараты пищевых волокон (кукурузные хлопья, крупы, хлеб).

Хилак форте содержит субстраты продуктов обмена индигенной микрофлоры кишечника, способствующих регенерации эпителиальных клеток слизистой оболочки кишечника и быстрому восстановлению нормофлоры. Препарат обычно назначают по 40–60 капель 3 раза в день в небольшом количестве жидкости (за исключением молока). Дозы и длительность приема препарата определяются индивидуально.

Клиническая эффективность комбинированных препаратов пробиотиков и пребиотиков (синбиотиков) пока остается малоизученной ввиду недостаточно накопленного опыта.

Вопросы безопасности использования пробиотиков

Длительный опыт клинического применения пробиотиков способствовал распространению и укреплению мнения их безопасности. Однако публикуемые в медицинской печати (особенно в последние годы) данные клинических наблюдений свидетельствуют о необходимости более глубокого анализа вопросов безопасности применения пробиотиков [32].

В настоящее время полагают, что оральный прием живых бактерий теоретически может быть ответственен за четыре типа побочных эффектов: а) развитие инфекционных процессов, обусловленных штаммами, входящими в состав пробиотиков; б) развитие метаболических расстройств; в) чрезмерная иммуностимуляция лимфатического аппарата кишечника; г) формирование новых клонов бактериальных штаммов за счет передачи генов, ответственных за экспрессию факторов патогенности.

Наибольшую настороженность вызывает возможность развития инфекционных процессов. Поскольку пробиотические штаммы бактерий отобраны из числа представителей индигенной микрофлоры, риск развития инфекционных процессов оценивается как очень низкий, но возможный. Данный тезис подкреплен целым рядом клинических наблюдений и обзорных статей, в которых описываются случаи развития бессимптомной бактериемии, тяжелого сепсиса, эндокардита, пневмонии и абсцессов, вызванных лакто-, бифидо- или другими бактериями [33, 34]. Поступление бактерий в кровоток возможен вследствие их транслокации через слизистую оболочку кишечника. Чаще всего факторами риска, связанными с бактериемией Lactobacillus, являются патологические процессы ЖКТ, обусловливающие снижение защитных барьерных функций, повышающих проницаемость слизистых оболочек кишечника (опухоли ЖКТ, травмы, операции) и иммуносупрессивные состояния.

Многие авторы отмечают, что бактериемию Lactobacillus очень трудно диагностировать, поскольку данный тип бактерий тяжело культивировать и идентифицировать, а в тех случаях, когда получают рост, это нередко расценивается как контаминация. Наиболее часто инфекционные процессы были обусловлены Lactobacillus rhamnosus, Lactobacillus fermentum и Lactobacillus casei.

Enterococcus faecium и E. faecalis тоже могут обусловить развитие инфекционных процессов. Кроме этого, уже имеются указания на появление ванкомицин-устойчивых штаммов энтерококков.

Определенное беспокойство вызывает и широкое применение препаратов, содержащих дрожжи — Saccharomyces boulardii, что связано с диагностируемой фунгемией [35]. Большинство исследователей отмечают, что развитие фунгемии обусловлено воздействием Saccharomyces boulardii на сосудистые катетеры.

Итак, дисбиотические нарушения ЖКТ — актуальная проблема практического здравоохранения, требующая глубокого теоретического, экспериментального и клинического исследования. Несмотря на то, что применение пробиотиков и является важной составной частью коррекции микробиоценоза, оно не должно являться самоцелью.

По вопросам литературы обращайтесь в редакцию.

В. А. Малов, доктор медицинских наук, профессор
Н. М. Гюлазян, кандидат медицинских наук
ММА им. И. М. Сеченова, Москва

Источник

Посев на микрофлору (идентификация агента и чувствительность к а/б)

Описание исследования

Посев отделяемого верхних дыхательных путей

Тестирование позволяет определить возбудителя инфекции и выбрать для лечения наиболее действенный антибиотик.

Достаточно часто причинами болезней верхних дыхательных путей (в частности, ринита или синусита (поражения носа), фарингита (слизистой оболочки горла)), является воздействие микроорганизмов:

Своевременная постановка диагноза с точным определением агента инфекции способствует проведению адекватного лечения, что в свою очередь, не позволяет перейти заболеванию из острой в хроническую форму.

Цель исследования – выявление микроорганизмов:

основных возбудителей инфекции, условно-патогенных бактерий:

представителей нормальной флоры:

Цель тестирования – выделение следующих возбудителей инфекции:

Посев раневого отделяемого и тканей

Результаты данного тестирования используются для назначения эффективного лечения ран с применением антибиотиков.

Часто сложные раны не лечатся должным образом, причиной чему во многих случаях является неправильное назначение антибиотиков.

Достаточно часто гнойно-воспалительные осложнения ран возникают из-за воздействия условно-патогенных бактерий. Однако еще более частыми возбудителями выступают бактерии, которые не нуждаются для нормальной жизнедеятельности в кислороде (частично или полностью). Общее название таких микроорганизмов – анаэробы. Осложнения ран вызывается некоторыми их представительями – грамотрицательными (неокрашиваемыми при проведении характерной реакции окрашивания по Граму) палочками, грамположительными (окрашиваемыми) кокками, не образующими спор палочками. При проявлении одинаковых симптомов осложнения и идентичности обнаруженных бактерий, реакция их на антибиотики у разных людей может иметь существенные различия.

Действенность лечения антибиотиками на данный момент оставляет желать лучшего. Однако точная идентификация микроорганизмов и определение их чувствительности к антибиотикам позволяет сделать процесс намного действеннее.

Цель исследования – выделение следующих возбудителей инфекции:

Важно. При отборе пробы необходимо иметь наготове транспортную среду.

Посев отделяемого (соскоба) из глаза

Исследование проводится с целью выделения следующих возбудителей:

— золотистого стафилококка (Staphylococcus aureus)

— эпидермиального стафилококка (Staphylococcus epidermidis) и некоторых других видов;

— пневмококков (Streptococcus pneumoniae);

— пиогенного стрептококка (Streptococcus pyogenes);

— стрептококка вириданс (Viridans streptococcus);

— кандиды (Candida) (чаще всего);

— кишечной палочки (Escherichia coli)

— нейссерии (Neisseria species);

— протея (Proteus vulgaris);

Посев отделяемого половых органов или соскоба из влагалища, цервикального канала, мочеиспускательного канала

Тест предназначен для идентификации бактерий, вызвавших неспецифическое инфекционно-воспалительное заболевание (т.е. когда агент инфекции, послуживший причиной его возникновения, не известен), и назначения по его результатам действенного лечения с применением антибиотиков.

В нормальном состоянии биоценоз (совокупность микроорганизмов, представляющих микрофлору) мочеполовой системы человека представлен более-менее постоянным, иногда зависящим от возраста, составом. Так, микрофлора влагалища женщин репродуктивного возраста в значительном количестве содержит строгие (облигатные – гибнущие при попадании в кислородную среду) и факультативные (которые могут существовать как с присутствием кислорода, так и без него) анаэробные организмы, большинство из которых – лактобациллы. В значительно меньшей мере его населяют аэробные (нуждающиеся для жизнедеятельности в нормальном содержании кислорода) и микроаэрофильные (которым достаточно сниженной концентрации кислорода) условно-патогенные бактерии. Во внутреннем канале шейки матки и в самой матке бактерии в нормальном состоянии отсутствуют.

Микрофлора девочек, не вступивших в фазу полового созревания, представлена кокками и дифтероидами (грамположительными палочками).

В ближних к наружному выходу отделах уретры (мочеиспускательного канала) здоровых мужчин могут присутствовать небольшие количества грамположительных палочек и кокков. В проксимальных (удаленных от выхода) отделах уретры, простате и семявыводящих канальцах в норме стерильно.

Если нарушается баланс между видами микроорганизмов и/или появляются несвойственные для данного места бактерии, это создает серьезную предпосылку для возникновения инфекционно-воспалительного процесса.

Болезни, характерные для женщин:

Болезни, часто встречающиеся у мужчин:

Результатом исследования является выделение условно-патогенных бактерий (т.е. тех, которые могут являться частью нормальной микрофлоры, но при ослаблении иммунитета становятся возбудителями заболеваний): энтеробактерий, стрептококков, стафилококков, гемофильных палочек, неферментирующих грамотрицательных бактерий, энтерококков, коринеформных бактерий, дрожжеподобных грибов (только констатируется факт их присутствия, виды не определяются).

Внимание! Исследование наличия специфических возбудителей – хламидий (Chlamydia trachomatis), влагалищной трихомонады (Trichomonas vaginalis), бледной спирохеты (Treponema pallidum), гонококка (Neisseria gonorrhoeae) в рамках данного теста не проводятся.

Посев отделяемого из уха

Данный тест предназначен для микробиологической диагностики гнойно-воспалительных заболеваний уха.

Гнойно-воспалительные процессы отличаются локализацией, их могут вызывать различные возбудители. По расположению очага болезни различают поражение:

Причиной заболеваний выступают следующие микроорганизмы:

Для быстрого выздоровления пациента, а также дл предотвращения перехода болезни из острой формы в хроническую, очень важно идентифицировать возбудитель и определить его чувствительность к антибиотикам.

Посев проводится для проверки наличия грамотрицательных бактерий, относящихся к семейству энтеробактерий (Enterobacteriaceae), синегнойной палочки (Pseudomonas aeruginosa), стафилококков, стрептококков (S. pyogenes, S. pneumoniae, S. viridans), коринебактерий, дрожжеподобных грибов, гемофильной палочки (Haemophilus influenzae).

Посев пункционного материала

Целью посева является выделение следующих возбудителей:

Для исследования отбираются пробы:

Посев на анаэробную микрофлору

Цель исследования – обнаружить присутствие микроорганизмов, живущих и растущих без доступа кислорода, при гнойно-воспалительных процессах.

Анаэробные бактерии благополучно живут в организме человека, составляя значительную часть его микрофлоры. Однако определенные условия могут сделать их причиной гнойных воспалений.

Независимо от того, в какой части тела расположен очаг, действие анаэробов не отличаются разнообразием – это гниение и газообразование. Чаще всего мишенью микроорганизмов становятся органы, в которых они обитают, вследствие чего происходит поражение мочеполовой системы, желудочно-кишечного тракта, верхних дыхательных путей. Проведение точной диагностики является жизненно необходимым – только это поможет назначить адекватное лечение и обезвредить инфекцию, представляющую смертельную опасность для организма человека.

Инфекция возбуждается превотеллами, вейлонеллами, клостридиями, пропионобактериями, эубактериями, пептострептококками, актиномицетами, фузобактериями, гемеллами, бифидобактериями, бактероидами, порфиромонадами.

При обследовании проводится тестирование:

Подготовка к исследованию

Отделяемое (соскоб) верхних дыхательных путей

Отбирать материал рекомендуется до приема пищи и питья, полоскания и прочих лечебных манипуляций или через 2 часа (минимум) после еды и питья. Отбор пробы проводится до начала приема антибиотиков, антисептиков, грибковых препаратов. При назначении специфической антибактериальной химиотерапии материал отбирается до ее проведения или не ранее, чем через сутки после введения препарата.

Для хранения и транспортировки отделяемого верхних дыхательных путей используется стерильный медицинский контейнер. До доставки в лабораторию он должен храниться в холодильнике.

Подписывая контейнер, необходимо указать ФИО, дату рождения, дату отбора пробы и откуда она была взята.

Взятие соскоба с задней стенки глотки или полости носа производится специальным тампоном, который помещается затем в транспортную систему со средой Амиеса (перед отбором пробы из носа необходимо удалить сухие корочки).

Тестирование нужно проводить перед применением противомикробных препаратов. Порция желчи, отобранная при операции, наиболее соответствует требованиям, предъявляемым к качеству биоматериала.

Если есть подозрения, что воспаление спровоцировано Клостридией перфрингенс (Clostridium perfringens), бактероидами Фрагилис (Bacteroides fragilis), пептострептококками (Peptostreptococcus sp), то рекомендуется посев на анаэробную микрофлору с определением чувствительности возбудителей к антибиотикам.

Посев раневого отделяемого и тканей

Обследование проводится до начала лечения антибиотиками.

Если у пациента рана от укуса, глубокая угревая сыпь, паронихия (воспаление околоногтевого валика), некротический фасциит (поражение бактериями соединительной оболочки – фасции и подкожной клетчатки), пролежни, газовая гангрена, то перед данным тестированием рекомендуется провести предварительные обследования: посев на анаэробы (бактерии, полностью или частично не нуждающиеся в кислороде) и бактериоскопия мазка на стекле.

При проведении обследования необходимо выполнять следующие требования:

Посев отделяемого (соскоба) из глаза

Отбор отделяемого для исследования производит лечащий врач или сам пациент. Обследование назначается до приема антибиотиков.

Соскоб отбирается с конъюнктивы глаза, с переходной складки при вывернутом верхнем или нижнем веке. Для этого используется специальный тампон, который после отбора пробы помещается в емкость с транспортной средой. При проведении специфической антибактериальной химиотерапии проба отбирается до ее начала или через сутки после введения препарата.

В рамках данного теста не исследуется наличие вирусов и хламидий.

Посев отделяемого половых органов

Проведение обследования на фоне приема антибиотиков не информативно. Материал отбирается до его начала или через полторы-две недели после окончания лечения антибактериальными препаратами или иммуномодуляторами.

Нецелесообразно проводить обследование женщин во время менструации, так как количество микроорганизмов в этот период значительно меньшее, чем обычно. Биоматериал отбирается, начиная с 5-7 дня от начала цикла.

Перед проведением тестирования:

Обследование не проводится после инструментального, мануального, ультразвукового исследований, физиопроцедур, кольпоскопии и прочих манипуляций.

У мужчин исследуется эякулят (сперма). Биоматериал собирается в контейнер с крышкой. Для сбора эякулята не используются:

Это объясняется тем, что вещества, в них присутствующие (используемые при производстве презервативов или оставшиеся в контейнере после дезинфекции) могут повлиять на результат обследования.

До доставки в лабораторию, контейнер с образцом хранится в холодильнике при температуре от +2 до +8⁰С, но не более 10-12 часов. Охлажденный эякулят должен быть доставлен для исследования в день сбора (в качестве «холодильника» при транспортировке может быть использован термос с небольшим количеством льда или пакет с охлаждающими элементами).

Соскоб из мочевого канала (уретры) обирается через 1,5-2 часа после мочеиспускания или перед ним. Отбор пробы рекомендуется проводить до начала специфической антибактериальной химиотерапии или не менее чем через сутки после последнего введения лекарственного средства.

Посев отделяемого из уха; посев пункционного материала

Исследование не целесообразно проводить на фоне лечения антибиотиками, применения антисептиков и противогрибковых средств.

Материал для посева собирается только в стерильные контейнеры.

Транспортные среды перед использованием хранятся в холодильнике. Они подогреваются до комнатной температуры за полчаса до применения. Для каждого вида исследования предназначена особая транспортная среда.

Контейнер (или пробирка) с биоматериалом обязательно подписывается. Необходимо указать фамилию и инициалы пациента, дату рождения, дату, время сбора материала, и откуда взята проба.

Хранение отобранного материала должно производиться согласно требованиям, предъявляемым к режиму и срокам.

Посев на анаэробную микрофлору

Обследование не рекомендуется проводить на фоне антибактериальной терапии.

Посев на аэробные микроорганизмы целесообразно проводить параллельно с посевами на микрофлору в условиях отсутствия кислорода и проведением микроскопического исследования мазка, сделанного отдельным стерильным тампоном на стекле. На бланке направления обязательно делается запись, если исследование предназначено для выявления клостридий (бактерий, живущих и растущих только при отсутствии кислорода) и актиномицетов (микроорганизмов, соединяющих в себе признаки грибов и бактерий).

Показания к исследованию

Посев отделяемого верхних дыхательных путей

Посев раневого отделяемого и тканей

Посев отделяемого (соскоба) из глаза

Тестирование назначается при наличии гнойно-воспалительных заболеваний глаз:

Особую группу риска составляют лица, пользующиеся контактными линзами.

Посев отделяемого половых органов (соскоб)

Посев отделяемого из уха

Показанием к проведению теста является наличие гнойных и негнойных отитов (воспаления уха).

Посев пункционного материала

Тестирование назначается при наличии гнойно-воспалительных заболеваний:

Посев на анаэробную микрофлору

Тестирование рекомендуется проводить:

Интерпретация исследования

Посев отделяемого верхних дыхательных путей

Результат обследования выдается на бланке лаборатории. Пациент получает следующую информацию:

В зависимости от вида обнаруженных возбудителей предлагается перечень противомикробных средств.

Если в результате посева дала рост в незначительном количестве нормальная, условно-патогенная или сопутствующая флора, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.

Данные, предоставляемые пациенту после обследования, содержат следующую информацию:

Выбор антимикробных средств производится в зависимости от идентифицированных бактерий.

Данное обследование не предназначено для определения вида грибов и их чувствительности к антигрибковым препаратам. Если возникает подозрение на грибковую инфекцию, проводится отдельное тестирование (посев на дрожжеподобные грибы).

Норма – желчь стерильна.

При отборе пробы методом дуоденального зондирования не исключено попадание в пробу сапрофитной микрофлоры (т.е. питающейся мертвой, разлагающейся органикой) рта и верхних отделов пищеварительного тракта (глотки, пищевода, желудка).

Если после посева в незначительном количестве дала рост нормальная, условно-патогенная или сопутствующая флора, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.

Посев раневого отделяемого и тканей

После проведения исследования пациент получает следующую информацию:

Противомикробные препараты подбираются в зависимости от вида обнаруженных возбудителей.

Попадание в посев микроорганизмов с кожи может вызвать незначительный рост сапрофитных бактерий.

При наличии заболевания происходит значительный рост бактерий, являющихся его причиной. Высокий титр позволяет диагностировать инфекцию. Количество колоний в таком случае превышает 10 000 КОЕ/тампон.

Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.

Посев отделяемого (соскоба) из глаза

После исследования предоставляются следующая информация:

Выбор антимикробных препаратов, рекомендуемых для проведения лечения, осуществляется исходя из вида выделенных бактерий.

Если есть вероятность грибковой инфекции, то проводится отдельный тест – «Посев на дрожжеподобные грибы».

Результаты интерпретируются следующим образом:

Посев отделяемого половых органов (соскоб)

Информация, предоставляемая после исследования:

Определение антимикробных препаратов осуществляется исходя из вида выделенных бактерий.

Результаты интерпретируются следующим образом:

При выявлении стрептококков Streptococcus agalactiae и Streptococcus pyogenes, являющихся патогенными (вызывающими заболевание), обязательно определяется чувствительность к антибиотикам независимо от количества колоний в единице объема.

Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.

Посев отделяемого из уха

После проведения исследования пациент получает следующую информацию:

Антимикробные препараты назначаются в зависимости от вида обнаруженных возбудителей.

Нормой является отсутствие роста.

Данный тест не предусматривает определение вида грибов и их чувствительности к противогрибковым препаратам.

Если в посев попали микроорганизмы с кожи, то происходит незначительный рост сапрофитных или условно-патогенных бактерий.

Если имеет место заболевание, то происходит рост бактерий, его вызывающих. Количество колоний в таком случае превышает 100 000 кое.

Если в наличие явные признаки заболевания, а рост при посеве отсутствует, целесообразно повторить отбор материала, т.к. он мог быть собран неправильно или на фоне применения антибиотиков.

Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.

Посев пункционного материала

После проведения исследования пациенту выдается следующая информация:

Выбор антимикробных препаратов осуществляется в зависимости от вида выявленных микроорганизмов.

Норма – рост отсутствует.

Если в посеве обнаружено присутствие представителей другой микрофлоры, попавших туда случайно из воздуха, с поверхности кожи или каким-то другим образом, об этом тоже сообщается в описании результатов.

В рамках теста не определяется вид грибов и их чувствительность к противогрибковым препаратам.

Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.

Посев на анаэробную микрофлору

Результат исследования включает в себя информацию о наличии или отсутствии роста бактерий. Положительный ответ подразумевает дополнительное определение чувствительности к антибиотикам.

Норма: рост при посеве отсутствует.

Результат теста выдается на бланке лаборатории медицинской компании «Наука». Пример по данному анализу представлен ниже:

Ф.И.О.: Иванов Сидор Петрович Пол: м Дата рождения: хх.хх.хххх

Дата исследования: хх.хх.хххх

Исследование

Результат

Нормы интерпретации

Примечание

[411] Посев на микрофлору (идентификация агента и чувствительность к аб)

Источник